Équipe
Responsable d’équipe : Bystricky Kerstin
Présentation
La structure de la chromatine, le mouvement des chromosomes et l’organisation du génome régulent-ils les processus nucléaires ? Pour répondre à ces questions, nous étudions la relation fonctionnelle entre la localisation d’un gène, sa dynamique intrinsèque et sa réponse aux stimuli. Nous analysons les mécanismes épigénétiques de l’expression génique dans les cellules de tumeur mammaire, en nous intéressant particulièrement au rôle des variants d’histones et au repliement 3D des domaines de chromatine au niveau des gènes cibles des récepteurs aux œstrogènes. Nous développons des techniques pour visualiser et imager l’ADN avec une haute résolution dans les cellules vivantes, au niveau des loci individuels et du génome entier, ainsi que des méthodes pour analyser et modéliser les données de manière quantitative. Notre défi est d’agir expérimentalement sur la structure afin d’en évaluer l’impact sur la fonction.
Projet 1
L’objectif principal de ce projet est de caractériser l’impact de mH2A1.1 sur la plasticité cellulaire des cellules TNBC en analysant son effet sur l’expression génique, l’architecture tridimensionnelle du génome et ses propriétés biophysiques.
Contrairement aux histones canoniques, les variants d’histone comme mH2A1.1, ont des structures particulières leur permettant d’influencer l’architecture de la chromatine et l’expression des gènes. mH2A1.1 joue un rôle dans des processus cellulaires essentiels, tels que la transition épithélio-mésenchymateuse (EMT) et le métabolisme cellulaire. Nous avons démontré que sa surexpression est associée à un pronostic défavorable pour les patientes atteintes d’un cancer du sein de type triple négatif (TNBCs).
Nous nous concentrons désormais sur la caractérisation des mécanismes moléculaires permettant à mH2A1.1 d’agir en tant que régulateur transcriptionnel dans les cellules TNBC. Notamment, nous avons constaté que mH2A1.1 est non seulement recruté au niveau de régions hétéochromatiniennes mais également au niveau de régions promotrices de gènes et de super-enhancers (SEs). Les SEs sont des organites sans membrane qui se forment par séparation de phases liquide-liquide (LLPS), un processus stimulé par les régions intrinsèquement désordonnées dans les facteurs de transcription et les coactivateurs. Étant donné la nature désordonnée et hautement chargée du domaine de liaison de mH2A1.1, il est possible qu’il contribue à la LLPS au niveau des SE, amplifiant ainsi localement l’expression génique.
Notre objectif est d’identifier les partenaires impliqués dans les activités transcriptionnelles de mH2A1.1, incluant ses fonctions répressives et activatrices, ainsi que d’explorer ses éventuelles propriétés de séparation de phases liquide-liquide (LLPS), qui pourraient être cruciales pour ses rôles fonctionnels. Au niveau cellulaire, nous étudions l’impact de mH2A1.1 sur le maintien de certaines caractéristiques mésenchymateuses et sur la plasticité cellulaire des cellules MDA-MB231, ainsi que son influence sur leur capacité à développer des métastases.
Projet 2
L’organisation de la chromatine dans les cellules eucaryotes a été largement étudiée du nucléosome jusqu’au génome, révélant l’importance de l’organisation spatiale de la chromatine dans la régulation des fonctions cellulaires. En revanche, les aspects temporels de l’organisation de la chromatine et ses propriétés dynamiques sont souvent négligés dans les analyses portant sur la régulation des processus liés à l’ADN.
Pour étudier l’implication de la dynamique de la chromatine dans les processus cellulaires, nous avons développé des outils moléculaires et d’analyse complémentaires. La méthode ANCHORTM est un système bipartite composé de séquences ANCH et de protéines OR. Les protéines OR peuvent être fusionnées à un marqueur fluorescent, de sorte qu’une concentration accrue de OR sur l’ADN ANCH crée un foyer fluorescent facilement détectable par microscopie de fluorescence. En parallèle, nous développons une approche originale de microscopie en direct pour décrire et quantifier la dynamique de la chromatine à l’échelle d’un noyau entier, appelée cartographie de diffusion à haute résolution (HiD), en collaboration avec l’équipe de biophysique de Manoel Manghi au LPT. La méthode HiD quantifie le mouvement local de la chromatine avec une précision subpixel, permettant de créer des cartes bidimensionnelles de la dynamique des domaines chromatiniens dans des cellules vivantes uniques.
Nous utilisons ces développements technologiques pour décrire et déduire l’importance de la dynamique de la chromatine dans les processus nucléaires. En combinant ANCHOR et HiD, nous souhaitons révéler la dynamique d’un locus unique dans des cellules individuelles et décrypter l’impact de la régulation de la transcription sur le mouvement de la chromatine. De plus, en utilisant une combinaison d’approches interdisciplinaires (HiD, modélisation polymère et données génomiques), nous visons à obtenir une compréhension mécanistique du lien entre l’architecture 3D du génome, le comportement et les propriétés dynamiques de la chromatine, et sa fonction.
L’approche HiD nous permet également d’étudier la dynamique spatiotemporelle de la chromatine au cours la sénescence induite par oncogène (OIS) chez les fibroblastes humains, plus précisément lors la formation des SAHFs (foci hétérochromatiques associés à la sénescence). Cela inclut l’étude du rôle des biomarqueurs épigénétiques des SAHFs tels que macroH2A1 et les modifications post-traductionnelles des histones. De plus, nous explorons les propriétés de certaines petites molécules naturelles qui agissent sur la chromatine. Récemment, nous avons identifié deux nouveaux groupes de molécules dérivées des plantes capables pour l’un d’induire la formation des SAHFs, tandis que l’autre induit des modifications de la chromatine sous l’influence de la lumière.
– Kocanova S., Raynal F., Goiffon I, Oksuz BA, Baú D, Kamgoué A, Cantaloube S, Zhan Y, Lajoie B, Marti-Renom MA, Dekker J, Bystricky K “Enhancer-driven local 3D chromatin domain folding modulates transcription in human mammary tumor cells” Life Science Alliance, 7(2), 2024
– Recoules, L., Tanguy Le Gac, N., Moutahir, F., Bystricky, K. & Lavigne, A. C#. (2023). Recruitment of the Histone Variant MacroH2A1 to the Pericentric Region Occurs upon Chromatin Relaxation and Is Responsible for Major Satellite Transcriptional Regulation. Cells 12. https://doi.org/10.3390/cells12172175
– Recoules, L., Heurteau, A., Raynal, F., Karasu, N., Moutahir, F., Bejjani, F., Jariel-Encontre, I., Cuvier, O., Sexton, T., Lavigne, A.C#, and Bystricky K#. (2022). The histone variant macroH2A1.1 regulates RNA polymerase II-paused genes within defined chromatin interaction landscapes. Journal of Cell science 135. https://doi.org/10.1242/jcs.259456
– Kempf, N., Moutahir, F., Goiffon, I., Cantaloube, S., Bystricky, K., and Lavigne, A.C#. (2021). Analysis of Cellular EMT States Using Molecular Biology and High Resolution FISH Labeling. Methods Mol Biol 2179, 353-383. https://doi.org/10.1007/978-1-0716-0779-4_27
– Barth R., Bystricky K. and Shaban HA “Coupling chromatin structure and dynamics by live super-resolution imaging” Science Advances 6, 2020
– Shaban HA, Barth R., Recoules, L. and Bystricky K. “HiD: Nanoscale mapping of nuclear dynamics in living human cells”. Genome Biology 21(1), 2020
– Germier T, Kocanova S, Walther N, Bancaud A, Shaban HA, Sellou H, Politi AZ, Ellenberg J, Gallardo F, Bystricky K (2017) Real-Time Imaging of a Single Gene Reveals Transcription-Initiated Local Confinement. Biophysical journal 113: 1383-1394
– Lavigne AC, Castells M, Mermet J, Kocanova S, Dalvai M, and Bystricky K. Increased macroH2A1.1 Expression Correlates with Poor Survival of Triple-Negative Breast Cancer Patients. PLoS ONE, 2014, 9 (6), pp.e98930. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0098930
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