Équipe
Responsable d’équipe : Crozatier Michelle & Haenlin Marc
Présentation
Dans la moelle osseuse des mammifères adultes, le renouvellement des cellules sanguines est assuré par les cellules souches/progénitrices (HSPCs) grâce à leur régulation par des signaux provenant du microenvironnement cellulaire ou « niche ». Étant donné la complexité des mécanismes impliqués et la grande conservation des réseaux de régulation chez les insectes et les vertébrés, l’organe hématopoïétique de la drosophile, la glande lymphatique (GL), est devenue un modèle pour l’étude de l’hématopoïèse. La GL se trouve le long du tube cardiaque, qui est le système vasculaire. Un petit groupe de cellules de la GL, appelé Centre de signalisation postérieur (PSC), ainsi que des cellules cardiaques servent de niches pour contrôler l’hématopoïèse dans des conditions normales. En réponse à un stress immunitaire, l’hématopoïèse de la GL évolue vers une hématopoïèse de stress. Alors que notre connaissance de la communication entre les HSPCs et les cellules de la niche dans des conditions normales progresse, les processus impliqués à la suite d’un stress immunitaire restent mal connus. L’objectif de notre projet est de déterminer comment les informations provenant de plusieurs types cellulaires sont coordonnées et intégrées pour réguler l’hématopoïèse de la GL dans des conditions normales et en réponse à un stress immunitaire.
Projet
Nous avons observé qu’un muscle somatique (AM1) et des neurones du SNC se trouvent à proximité de la GL, révélant un environnement tissulaire complexe autour de l’organe hématopoïétiqu. Nous avons établi les profils transcriptionnels des cellules de la GL et des tissus associés à la résolution de la cellule unique, avant et après parasitisme. En combinant des analyses fonctionnelles de gènes candidats (notre « scRNAseq »), de la microscopie confocale, à expansion, et électronique, nous prévoyons de découvrir comment divers microenvironnements cellulaires (PSC, cellules cardiaques, AM1 et neurones) s’organisent autour de la GL et communiquent avec elle afin de réguler l’hématopoïèse.
Membres de l'équipe
– Tian Y, Morin-Poulard I, Liu X., Vanzo N. and Crozatier M*. (2023). A mechanosensitive vascular niche for Drosophila hematopoiesis. PNAS 120 (18) e2217862120, https://doi.org/10.1073/pnas.2217862120
– Morin-Poulard* I., Destalminil-Letourneau M., Bataille L., Frendo J.L., Lebreton G., Vanzo N. and Crozatier M.* (2022). Identification of bi-potential blood cell/nephrocyte progenitors in Drosophila: another route for generating blood progenitors. Front. Cell Dev. Biol., 14 February 2022, doi:10.3389/fcell.2022.834720
– Moussalem D., Augé B., Di Stefano L., Osman D., Gobert V. and Haenlin M.*(2022). Two Isoforms of serpent Containing Either One or Two GATA Zinc Fingers Provide Functional Diversity During Drosophila Development. Front. Cell Dev. Biol., 01 February 2022 | https://doi.org/10.3389/fcell.2021.795680
– Morin-Poulard I, Tian Y, Vanzo N, Crozatier M.* (2021). Drosophila as a Model to Study Cellular Communication Between the Hematopoietic Niche and Blood Progenitors Under Homeostatic Conditions and in Response to an Immune Stress. Front Immunol Aug 16;12:719349. doi: 10.3389/fimmu.2021.719349. eCollection 2021. PMID: 34484226 (review)
– Destalminil-Letourneau M, Morin-Poulard I, Tian Y, Vanzo N, Crozatier M.* (2021). The vascular niche controls Drosophila hematopoiesis via fibroblast growth factor signaling. Elife. Jan 4;10:e64672. doi: 10.7554/eLife.64672.PMID: 33395389
– Louradour I, Sharma A, Morin-Poulard I, Letourneau M, Vincent A, Crozatier M*, Vanzo N*. (2017). Reactive oxygen species-dependent Toll/NF-κB activation in the Drosophila hematopoietic niche confers resistance to wasp parasitism. Elife. Nov 1;6:e25496. doi: 10.7554/eLife.25496. PMID: 29091025
– Miller M, Chen A, Gobert V, Augé B, Beau M, Burlet-Schiltz O, Haenlin M, Waltzer L. (2017). Control of RUNX-induced repression of Notch signaling by MLF and its partner DnaJ-1 during Drosophila hematopoiesis. PLoS Genet. Jul 25;13(7):e1006932. doi: 10.1371/journal.pgen.1006932. eCollection 2017 Jul. PMID: 28742844
– Morin-Poulard I, Sharma A, Louradour I, Vanzo N, Vincent A, Crozatier M.* (2016). Vascular control of the Drosophila haematopoietic microenvironment by Slit/Robo signaling. Nat Commun. May 19;7:11634. doi: 10.1038/ncomms11634.PMID: 27193394
– Oyallon J, Vanzo N, Krzemień J, Morin-Poulard I, Vincent A, Crozatier M.* (2016). Two Independent Functions of Collier/Early B Cell Factor in the Control of Drosophila Blood Cell Homeostasis. PLoS One. Feb 11;11(2):e0148978. doi: 10.1371/journal.pone.0148978. eCollection 2016. PMID: 26866694
– Benmimoun B, Polesello C, Haenlin M, Waltzer L (2015). The EBF transcription factor Collier directly promotes Drosophila blood cell progenitor maintenance independently of the niche. Proc Natl Acad Sci U S A. 2015 Jul 21;112(29):9052-7. doi: 10.1073/pnas.1423967112.
– Pennetier D., Oyallon J., Morin-Poulard I., Dejean S., Vincent A. and Crozatier. M* (2012). Size control of the Drosophila hematopoietic niche by bone morphogenetic protein signaling reveals parallels with mammals. PNAS, 109 (9): 3389-3394.
– Makki R., Meister M., Pennetier D., Ubeda J.M., Braun A., Daburon V., Krzemien J., Bourbon H.M., Zhour R., Vincent A. and Crozatier M.*(2010). A short receptor down-regulates JAK/STAT signalling to control the Drosophila cellular immune response. PLoS Biology,8:8, e1000441.
– Krzemien J., Dubois L., Makki R., Meister M., Vincent A. and Crozatier M* (2007). Control of blood homeostasis in Drosophila larvae by the Posterior Signaling Center. (Nature , 446 : 325-328)
– Crozatier M., Ubeda J.M., Vincent A. and Meister M. (2004). Cellular Immune Response to parasitization in Drosophila requires the EBF orthologue Collier. PloS Biology 2 :1107-1113.
